2020-04-30 Artykuł

Roślinne preparaty przeciwwirusowe do wspomagania organizmu w czasie infekcji górnych dróg oddechowych

Infekcje górnych dróg oddechowych to najczęstszy problem zdrowotny, nasilający się w okresie jesienno-zimowym. Za infekcje górnych dróg oddechowych odpowiadają wirusy, takie jak wirus grypy  typu A, B i C, scyntialny wirus oddechowy (RSV), rynowirusy (HRV14) oraz koronawirusy, w tym powodujący nową epidemię wirus SARS-CoV-2. Aktualnie w Polsce mamy okres dużego nasilenia zachorowań na grypę, a jednocześnie na COVID-19, chorobę wywoływaną przez rozprzestrzeniającego się koronawirusa SARS-CoV-2.

Obecnie nie ma leku przeciw koronawirusowi SARS-CoV-2 ani szczepionki. Nadzieją dla zainfekowanych pacjentów jest ich własny system odporności

W 2016 r. przebadano przeciwwirusową aktywność preparatu zawierającego ekstrakt z pelargonii afrykańskiej, sok z czarnego bzu, beta-glukan, witaminę C i glukonian cynku, nazywając ten zestaw „czynnikiem blokującym wirusy, VBF”.  Badania wykonano in vitro na całej serii wirusów wywołujących infekcje górnych dróg oddechowych: wirus grypy (FluAH1N1), wirus paragrypy (Para3), rynowirus (HRV14),  adenowirus (Adeno5). Okazało się, że VBF miał silne działanie przeciwwirusowe wobec szczepów FluAH1N1 oraz HRV14. Potrzebne są badania kliniczne, ale wyniki testów można wykorzystać, włączając do diety sok z czarnego bzu i inne składniki tego preparatu w postaci suplementów.

 

 

  Czytaj pełny tekst

Autor: prof. dr hab. Iwona Wawer

Data publikacji: 2020-04-30

Źródło: "Lek w Polsce" nr 03/2020

Słowa kluczowe: fitoterapia, infekcje wirusowe, rośliny przeciwwirusowe, czarny bez, pelargonia afrykańska, jeżówka, aloes, porost islandzki

1. Fal AM, Conrad F, Schonknecht K, Sievers H, Pawińska A. Wiadomości Lekarskie. 2016;59(3):499.
2. Kolodziej H. Antimicrobial, antiviral and immunomodulatory activity studies of Pelargonium Sidoides (EPs® 7630) in the context of health promotion. Pharmaceuticals 4.10 (2011):1295-1314; Witte K, Koch E, Volk HD, et al. The Pelargonium sidoides extract EPs 7630 drives the innate immune defense by activating selected MAP kinase pathways in human monocytes. PloS One 2015;10:e0138075.
3. Michaelis M, Doerr HW, Cinatl J Jr. Investigation of the influence of EPsVR 7630, a herbal drug preparation from Pelargonium sidoides, on replication of a broad panel of respiratory viruses. Phytomedicine. 2011;18:384-6; Theisen LL, Muller CP. EPsVR 7630 (UmckaloaboVR), an extract from Pelargonium sidoides roots, exerts anti-infl uenza virus activity in vitro and in vivo. Antiviral Res. 2012;94:147-56.
4. Kayser O, Kolodziej H, Kiderlen AF. Immunomodulatory principles of Pelargonium sidoides. Phytother Res. 2001;15:122-6; Kolodziej H, Kiderlen AF. In vitro evaluation of antibacterial and immunomodulatory activities of Pelargonium reniforme, Pelargonium sidoides and the related herbal drug preparation EPs® 7630. Phytomedicine. 2007;14(Suppl6):18-26.
5. Conrad A, Hansmann C, Engels I, et al. Extract of Pelargonium sidoides (EPs® 7630) improves phagocytosis, oxidative burst, and intracellular killing of human peripheral blood phagocytes in vitro. Phytomedicine. 2007;14(Suppl6):46-51.
6. Community herbal monograph on Pelargonium sidoides DC and/or Pelargonium reniforme Curt., radix EMA/HMPC/560961/2010.
7. Timmer A, Günther J, Motschall, et al. (22 October 2013). Pelargonium sidoides extract for treating acute respiratory tract infections. The Cochrane database of systematic reviews 10: CD006323
8. Fitoterapia i leki roślinne [red. Lamer-Zarawska E, Kowal-Gierczak B, Niedworok J]. PZWL, Warszawa, 2007.
9. Roschek B Jr, Fink RC, McMichael MD, Li D, Alberte RS. Elderberry flavonoids bind to and prevent H1N1 infection in vitro. Phytochem. 2009;70(10):1255-61.
10. Shahsavandi S, Ebrahimi MM, Hasaninejad Farahani. Interfering with lipid raft association: A mechanism to control infl uenza virus infection by Sambucus Nigra, Iranian J. Pharm. Res. 2017;16 (3):1147-1154.
11. Swaminathan K, Dyason JC, Maggioni A, et al. Binding of a natural anthocyanin inhibitor to infl uenza neuraminidase by mass spectrometry. Anal Bioanal Chem. 2013;405(20):6563–72.
12. Barak V, Halperin T, Kalickman I. The effect of Sambucol, a black elderberry based, natural product, on the production of human cytokines: I. infl ammatory cytokines. Eur Cytokine Netw. 2001;12(2):290-296.
13. Ho GT, Zou YF, Aslaksen TH, Wangensteen G, Barsett H. Structural characterization of bioactive pectic polysaccharides from elderfl owers (Sambuci fl os). Carbohydr Polym. 2016;135:128-137.
14. Barsett H, Asiaksen TH, Gildhyal P, et al. Comparison of carbohydrate structures and immunomodulating properties of extracts from berries and flowers of Sambucus nigra L. Eur J Med Plants. 2012;2(3):216-29.
15. Zakay-Rones Z, Varsano N, Zlotnik M, et al. Inhibition of several strains of infl uenza virus in vitro and reduction of symptoms by an elderberry extract (Sambucus nigra L.) during an outbreak of influenza B Panama. J Altern. Compl. Med. 1995;1(4):361-369.
16. Porter RS, Bode RF. A Review of the Antiviral Properties of Black Elder (Sambucus nigra L.) Products. Phytother Res. 2017;31(4):533-554.
17. Porter RS, Bode RF, A Review of the Antiviral Properties of Black Elder (Sambucus nigra L.) Products, Phytother. Res. 2017;31:533-554.
18. Hawkins J, Baker C, Cherry L, Dunne E. Black elderberry (Sambucus nigra) supplementation effectively treats upper respiratory symptoms: A meta-analysis of randomized, controlled clinical trials. Complement Ther Med. 2019;42:361-365.
19. Wawer I, Paradowska K, Owoce czarnego bzu – dietetyczne wsparcie terapii przeziębienia i grypy. Lek w Polsce. 2018(28);11-12: 20-26.
20. Community herbal monograph on Aloe barbadensis Miller and on Aloe (various species, mainly Aloe ferox and its hybrids (cape aloes), EMEA/HMPC/76310/2006.
21. Chow J T N, Williamson D A, Yates K M, Goux W J. Chemical characterization of the immunomodulating polysaccharide of Aloe vera L. Carbohyd Res. 2005;340,1131-1142.
22. Alonso-Sande M, Teijeiro-Osorio D, Remuñán-Lopez C, Alonso MJ. Glucomannan, a promising polysaccharide for biopharmaceutical purposes. Eur J Pharm Biopharm. 2009;72:543-562.
23. Nejatzadeh-Barandozi F. Antibacterial activities and antioxidant capacity of Aloe vera. Org Med Chem Lett. 2013;3(1):511-519.
24. Gawron-Gzella A, Michalak A, Kędzia A. Antimicrobial activity of preparation Bioaron C. Acta Pol Pharm Drug Res. 2014;71 (5):795-802.
25. Paradowska K, Wawer I. Aloes: składniki o działaniu immunomodulującym i przeciwcukrzycowym. Lek w Polsce. 2016;3-4:64-69.
26. Ingólfsdóttir K, Jurcic K, Fischer B, Wagner H. Immunologically active polysaccharides from Cetraria islandica. Planta Med. 1994;60:527-31.
27. Gupta VK, Verma S, Gupta S, et al. Membrane-damaging potential of natural L-(-)-usnic acid in Staphylococcus aureus. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2012;31(12):3375-83.
28. Efferth T, Beyond malaria: The inhibition of viruses by artemisinin-type compounds, Biotechnol. Adv. 2018;36(6):1730-1737.
29. Savarino A, Boelaert JR, Cassone A, Majori G, Cauda R. Effects of chloroquine on viral infections: an old drug against today’s diseases? Lancet Infect. Dis. 2003;3:722-727.
30. Keyaerts E, Vijgen L, Maes P, Neyts J, Van Ranst M. In vitro inhibition of severe acute respiratory syndrome coronavirus by chloroquine. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004;323:264–268.
31. Wójcik R, Janowska E, Malaczewska J, Siwicki AK. Effect of β-1,3/1,6-D-glucan on the phagocytic activity and oxidative metabolism of peripheral blood granulocytes and monocytes in rats. Bull Vet Inst Pulawy. 2009;53(2):241-246.
32. Graubaum H, Busch R, Stier H, Gruenwald J. A double-blind, randomized, placebo-controlled nutritional study using an insoluble yeast beta-glucan to improve the immune defense system. Food Nutr Sci. 2012;3(6):738-746.
33. Bałan B, Rozewski F, Zdanowski R, Skopinska-Rozewska E. (2012). Immunotropic activity of Echinacea. Part I. History and chemical structure. Central-European J Immunol. 2012;37:45-50.
34. Hudson J, Vimalanathan S, Kang L, et al. Characterization of antiviral activities in Echinacea root preparations. Pharmac Biol 2005; 43:790-796.; Vimalanathan S, Kang L, Treyvaud Amiguet V, et al. Echinacea purpurea aerial parts contain multiple antiviral compounds. Pharmac Biol. 2005;43:740-745.
35. Pleschka S, Stein M, Schoop R, Hudson JB. Anti-viral properties and mode of action of standardized Echinacea purpurea extract against highly pathogenic avian Infl uenza virus (H5N1, H7N7) and swine-origin H1N1 (S-OIV). Virology J. 2009;6:197.
36. Zgórniak-Nowosielska I, Grzybek J, Manolova N, et al. Antiviral activity of Flos verbasci infusion against influenza and Herpes simplex viruses. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 1991;39(1-2):103-8.
37. Dastagir G, Rizvi M A. Review – Glycyrrhiza glabra L. (Liquorice). Pak. J. Pharm. Sci. 2016;29(5):1727–1733.
38. Feng Yeh C, Wang KC, Chiang LC, et al. Water extract of licorice had anti-viral activity against human respiratory syncytial virus in human respiratory tract cell lines. J Etnopharmacol. 2013;148(2):466-73.
39. Cinatl J, Morgenstern B, Bauer G, Chandra P, et al. Glycyrrhizin, an active component of liquorice roots, and replication of SARS-associated coronavirus. Lancet 2003;361(9374):2045-6.
40. Hoever G, Baltina L, Michaelis M, Kondratenko R, et al. Antiviral activity of glycyrrhizic acid derivatives against SARS-coronavirus. J Med Chem.
POWRÓT
reklama Baner_prawy_ZALOGU-SIE
...
Info
Najczęściej czytane
Redaktor poleca
GP

Na skróty

Informacje

Copyright © Medyk sp. z o.o